Détection de la contamination croisée des lignées cellulaires : Pourquoi le profilage STR est essentiel pour valider vos lignées cellulaires

Le saboteur invisible dans les laboratoires de culture cellulaire

Dans la recherche biomédicale contemporaine, les lignées cellulaires de mammifères en continu représentent les moteurs biologiques indispensables à la découverte de cibles, à la validation des voies biochimiques, au dépistage pharmacologique, à l'évaluation toxicologique et à la modélisation des maladies translationnelles. Cependant, la validité scientifique, la reproductibilité et la pertinence translationnelle de chaque expérience in vitro dépendent entièrement d'une base biologique sans compromis : l'authenticité génétique absolue, la pureté et la stabilité de la population cellulaire cultivée. Lorsqu'une lignée cellulaire étrangère non reconnue infiltre, contamine ou remplace une culture cellulaire cible, les données expérimentales générées sont fondamentalement invalidées.

La contamination croisée des lignées cellulaires n'est ni un vestige historique ni une anomalie isolée des laboratoires. Des audits de qualité systématiques réalisés au cours des dernières décennies par les principaux centres de ressources biologiques au monde—y compris l'American Type Culture Collection (ATCC), l'Institut Leibniz DSMZ (Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen), la Japanese Collection of Research Bioresources (JCRB), l'European Collection of Authenticated Cell Cultures (ECACC) et le RIKEN BioResource Research Center—démontrent de manière constante que entre 15 % et 36 % des lignées cellulaires actives dans les laboratoires académiques, cliniques et industriels sont mal identifiées, contaminées par croisement ou complètement envahies par une lignée cellulaire de donneur non apparentée.

Le Comité international d'authentification des lignées cellulaires (ICLAC) gère l'autorité Registre des lignées cellulaires mal identifiées, qui catalogue actuellement près de 600 lignées cellulaires continues dans le monde entier qui ont prouvé être complètement déplacées ou contaminées croisées, ne possédant aucun stock original authentique connu. Des exemples historiques et contemporains notables soulignent la nature insidieuse de ce phénomène :
• HEp-2 et KBDiffusés à l'échelle mondiale pendant des décennies comme des modèles de carcinome laryngé humain et de carcinome épidermoïde oral, respectivement, mais prouvés par typage cytogénétique et moléculaire comme étant entièrement composés de cellules d'adénocarcinome cervical HeLa.
• Chang Foie: Initialement établi et distribué comme un épithélium hépatique humain normal, mais s'est avéré être un contaminant agressif de HeLa.
• MDA-MB-435Cité de manière extensive dans des milliers de publications évaluées par des pairs comme un modèle d'adénocarcinome canalaire mammaire métastatique, jusqu'à ce que le profilage d'expression multi-omique et le fingerprinting de microsatellites confirment sa véritable origine en tant que lignée cellulaire de mélanome humain M14.
• DÉSIR et INT407Distribué comme l'amnios humain et l'épithélium intestinal embryonnaire, mais génétiquement identique à HeLa.

Parce que les cultures cellulaires de mammifères présentent une uniformité morphologique trompeuse sous un microscope à contraste de phase standard, la contamination croisée est pratiquement indétectable par inspection visuelle. Un contaminant agressif peut silencieusement prendre le contrôle d'une culture cible en quelques semaines, remplaçant complètement la population de cellules hôtes tout en maintenant un monolayer d'apparence saine.

Alors que notre hub d'authentification complète des lignées cellulaires fournit un aperçu général de la crise de la reproductibilité et du paysage réglementaire, ainsi que notre manuel technique dédié sur Profilage STR pour les lignées cellulaires humaines détails la chimie fondamentale du dimensionnement par électrophorèse capillaire, ce guide exhaustif se concentre spécifiquement sur la science diagnostique de détection de la contamination croisée et déconvolution de profils mixtesNous examinons les fluidiques physiques et la cinétique de croissance régissant la surcroissance des cultures, évaluons des modalités de diagnostic multi-technologiques orthogonales, établissons des modèles mathématiques rigoureux pour résoudre les contributeurs contaminant mineurs dans des électrophorogrammes multi-alléliques, analysons six études de cas de diagnostic en laboratoire dans le monde réel et fournissons une procédure opérationnelle standard (SOP) institutionnelle pour la défense contre les barrières de contamination et la récupération d'urgence en cas de catastrophe.

Comment la contamination se produit : physique, fluidique et cinétique de croissance

• Dynamique des fluides et vecteurs de transmission physique

La contamination croisée au sein du laboratoire de culture cellulaire est régie par la mécanique des fluides physiques, les micro-aérosols de manipulation des liquides, les pratiques de gestion des réactifs et la cinétique de croissance cellulaire exponentielle concurrentielle. Comprendre ces mécanismes est essentiel pour établir des barrières de confinement physiques et procédurales robustes :
1. Génération de gouttelettes médiée par aérosolLorsque le liquide est rapidement aspiré ou expulsé à l'aide de pipettes sérologiques ou de micropipettes mécaniques—en particulier lors de l'expulsion de la dernière goutte ("blow-out")—la rupture rapide de la tension superficielle du liquide génère des aérosols liquides microscopiques. Ces aérosols ont un diamètre allant de 0,5 μm à 5,0 μm et contiennent des cellules uniques viables et intactes ou des grappes de cellules. En raison de leur faible vitesse de sédimentation terminale, ces microgouttelettes cellulaires restent en suspension dans les courants d'air des cabines de biosécurité pendant plusieurs minutes, se déposant sur des flacons de culture ouverts, des plaques multi-puits ou des réservoirs de réactifs.
2. Perturbation de la couche limite d'écoulement laminaireLes cabinets de biosécurité de classe II type A2 créent un espace de travail stérile en projetant un rideau laminaire vertical d'air filtré HEPA vers le bas, vers la surface de travail. Cependant, les mouvements rapides des mains de l'opérateur, un encombrement excessif de l'équipement ou un blocage partiel de la grille d'entrée avant perturbent la couche limite laminaire. Ces perturbations créent des tourbillons turbulents et des courants de tourbillon qui transportent des gouttelettes cellulaires en suspension à travers les vaisseaux adjacents.
3. Réservoirs de réactifs et de médias partagésL'utilisation de grandes bouteilles de 500 mL de milieux de culture, de tampon phosphate saline (PBS) ou de trypsine-EDTA à travers plusieurs lignées cellulaires distinctes représente l'un des vecteurs les plus courants de contamination croisée à l'échelle du laboratoire. Un seul contact accidentel entre un cylindre de pipette, un embout ou une manche contaminé(e) et l'intérieur du col d'une bouteille de réactif inocule de manière permanente l'ensemble du volume, transférant des cellules étrangères dans chaque culture ultérieure manipulée avec ce réactif.
4. Manipulation Multi-Lignes ConcurrenteLa manipulation de plusieurs lignées cellulaires simultanément dans la même hotte de biosécurité augmente considérablement la probabilité de mélanges de récipients, de réinjections accidentelles de pipettes ou de mauvaise étiquetage.
5. Erreurs de stockage cryogéniqueLe stockage de cryovials dans la phase liquide des réservoirs d'azote liquide sans tubulure cryogénique scellée à chaud peut permettre à l'azote liquide d'entrer par des micro-fissures dans les bouchons à vis. Lors du dégel, une vaporisation violente peut provoquer des fuites croisées ou un transfert d'échantillons entre les vials immergés.

• Modélisation mathématique de la surcroissance concurrentielle : le paradigme HeLa

Lorsqu'une lignée cellulaire continue agressive et hautement transformée (comme HeLa, HEK-293T ou Jurkat) contamine une culture cible primaire, spécialisée ou dérivée à croissance plus lente, le remplacement de la population suit le modèle mathématique classique de la croissance cellulaire exponentielle : N(t) = N₀ · 2^{t / T_d}, où N(t) est la population cellulaire au temps t, N₀ est le numéro de départ cellulaire initial, et T_d représente le temps de doublement de la population.

Pour quantifier la cinétique rapide du déplacement compétitif, considérons un scénario de contamination en laboratoire réaliste où une culture cellulaire épithéliale prostatique humaine primaireT_d = 48 heures) est accidentellement inoculé avec une minute trace de cellules d'adénocarcinome cervical HeLa (T_d = 20 heures) à un ratio de contamination initial de 1 : 1 000 (c'est-à-dire, une fréquence de contaminant de 0,10 %, représentant une seule gouttelette contenant 1 000 cellules HeLa entrant dans un plat de 1 000 000 de cellules cibles) :

Figure 1. Cinétique de croissance de la population et déplacement compétitif des lignées cellulaires cultivées, illustrant la progression mathématique par laquelle un contaminant initial de 0,1 % (par exemple, HeLa avec Td = 20 h) remplace complètement une culture primaire cible à croissance plus lente (Td = 48 h) au cours de 8 passages successifs.

• Dynamiques de contamination croisée interspécifique vs. intraspécifique

• Contamination croisée intraspécifique (Homme sur Homme / Souris sur Souris)Représente plus de 80 % de tous les événements de contamination de lignées cellulaires documentés dans la recherche biomédicale. Étant donné que les deux populations cellulaires utilisent des milieux de base identiques (par exemple, DMEM ou RPMI-1640), des concentrations de sérum de veau fœtal et des suppléments de facteurs de croissance, il n'y a aucune barrière nutritionnelle ou physiologique à la surcroissance compétitive.
• Contamination croisée interespèces (Infiltration entre espèces)Impliquent l'infiltration de lignées cellulaires animales (par exemple, les fibroblastes 3T3 de souris, les ovaires de hamster chinois CHO, les cellules Vero de singe vert africain ou les cellules MDCK canines) dans des cultures humaines, ou vice versa. La contamination inter-espèces survient fréquemment en raison de l'utilisation de couches de soutien de souris dans la culture de cellules souches humaines, de la co-culture de tissus primaires de patients avec des lignées de soutien de rongeurs, ou de l'utilisation d'homogénats de tissus animaux primaires non stérilisés dans des installations partagées.

La Boîte à Outils Diagnostique : Comparaison Multi-Technologies

• Profilage des Répétitions Courtes en Tandem (STR) : La Référence en Matière de Pureté Intraspécifique

L'amplification par PCR multiplex de 16 à 24 loci microsatellites polymorphes suivie d'une électrophorèse capillaire multicanaux représente la norme internationale universellement acceptée pour détecter la contamination croisée intraspécifique humaine (et murine). Dans une lignée cellulaire humaine authentique et pure, chaque locus génère un maximum de deux pics (représentant des génotypes homozygotes ou hétérozygotes). L'apparition de trois ou quatre pics distincts à travers plusieurs loci indépendants fournit une preuve sans ambiguïté d'une culture mixte. Les instruments d'électrophorèse capillaire standard (par exemple, ABI 3500xl, 3730xl) atteignent une limite de détection analytique (LOD) de 5 % à 10 % contributeur mineur de fréquence cellulaire au sein d'une culture mixte.

• Barcoding ADN de la sous-unité I de la cytochrome c oxydase (COI) : Discrimination interspécifique

Codage à barres ADN de la mitochondrie Sous-unité I de la cytochrome c oxydase (COI) le gène représente la norme définitive pour la classification taxonomique des espèces et la détection de la contamination interspécifique. Les amorces universelles de Folmer (LCO1490 et HCO2198) amplifier une région d'ADN mitochondrial de 658 pb contenant une forte divergence de séquence interspécifique, encadrée par des sites de liaison de primers universellement conservés. Après amplification par PCR, l'amplicon subit une séquençage bidirectionnel. Séquençage de SangerLa séquence consensus résultante est interrogée dans les bases de données du Système de Données sur les Codes à Barres de la Vie (BOLD) et GenBank de NCBI. Pour les méthodologies d'authentification systématique des lignées cellulaires non humaines, consultez notre guide technique compagnon sur Authentification des lignées cellulaires spécifiques à l'espèce.

• Électrophorèse des isoenzymes, caryotypage et séquençage de nouvelle génération

• Électrophorèse des isoenzymesÉvalue les motifs de mobilité électrophorétique des enzymes intracellulaires polymorphes (G6PD, LDH, MDH, NP, AST) dans des gels d'agarose. Historiquement instrumental dans la découverte de la crise HeLa (G6PD Type A), il a une limite de détection de 10 % à 20 %.
• G-Banding et caryotypage spectral (SKY)Identifie les nombres de chromosomes modaux bruts (par exemple, distinguant les lignées diploïdes des lignées hypertriploïdes HeLa avec 70 à 82 chromosomes) et détecte les chromosomes marqueurs signatures (par exemple, les chromosomes marqueurs HeLa). der(5)t(5;1) ou chromosome de Philadelphie t(9;22) dans K562).
• Séquençage de nouvelle génération: Haut débit Séquençage de région ciblée et Séquençage du génome entier associé à une approche basée sur la bioinformatique Analyse de l'appel de variants peut détecter la contamination croisée jusqu'à < 1,0 % fréquences des allèles mineurs.

Figure 2. Cadre de diagnostic multi-technologies pour la validation de la pureté des lignées cellulaires, en comparant les mécanismes analytiques, les portées cibles et les limites de détection (LOD) pour le profilage STR, le codage-barres ADN mitochondrial COI, l'électrophorèse des isoenzymes, le caryotypage par G-banding et le NGS ciblé.

Interprétation des profils STR mixtes et déconvolution mathématique

• Caractéristiques morphologiques d'un électrophorogramme de culture mixte

Un véritable événement de contamination croisée biologique présente des caractéristiques électrophorétiques multi-locus spécifiques :
1. Loci tri-alléliques et tétra-alléliquesLes cellules humaines diploïdes normales contiennent un maximum de deux allèles par locus autosomal. L'apparition de trois pics distincts (tri-allélique) ou de quatre pics distincts (tétrallélique) à travers plusieurs loci indépendants établit la présence de deux contributeurs génétiques distincts.
2. Distribution Générale du Génome à l'Échelle MondialeContrairement à l'aneuploïdie chromosomique localisée, la contamination croisée introduit des chromosomes étrangers de manière uniforme dans l'ensemble du génome nucléaire. Par conséquent, des pics supplémentaires apparaissent systématiquement sur des chromosomes indépendants (par exemple, simultanément à D3S1358 sur Chr 3, D5S818 sur Chr 5, D7S820 sur Chr 7 et D13S317 sur Chr 13).
3. Rapports de hauteur de pics mineurs à majeurs cohérentsDans une culture mixte, tous les allèles supplémentaires fournis par la population minoritaire présentent des hauteurs de pics fluorescents proportionnelles à tous les loci correspondant à leur ratio cellulaire relatif.

• Calcul de la proportion des contributeurs mineurs

Pour quantifier la proportion de cellules contaminantes au sein d'une culture mixte, les évaluateurs calculent le rapport entre le signal de l'allèle mineur et le signal fluorescent total à travers tous les loci informatifs et non chevauchants :

Proportion du Contributeur Mineur (%) = [∑ RFU_{allèles mineurs} / (∑ RFU_{allèles majeurs} + ∑ RFU_{allèles mineurs})] × 100 %

• Calcul de l'échantillon à travers des loci informatifs:
- Locus D13S317: Allèles majeurs 11 (2 200 RFU) et 14 (2 050 RFU) ; Allèles mineurs 8 (220 RFU) et 12 (190 RFU).
- Locus vWA: Allèles majeurs 16 (1 850 RFU) et 18 (1 900 RFU) ; Allèles mineurs 14 (170 RFU) et 19 (185 RFU).
- Total des RFU mineurs à travers les loci = (220 + 190) + (170 + 185) = 765 RFU.
- Total des RFU majeurs à travers les loci = (2 200 + 2 050) + (1 850 + 1 900) = 8 000 RFU.
- Pourcentage de contributeur mineur = [765 / (8 000 + 765)] × 100% = 8,73 %.
• Interprétation diagnostiqueLa culture se compose d'environ 91,3 % de cellules hôtes primaires et de 8,7 % de cellules secondaires contaminantes. Comme cela dépasse la limite de détection analytique de 5,0 %, l'échantillon est formellement classé comme un culture mixte contaminée.

Figure 3. Déconvolution quantitative d'un électrophorogramme STR mixte, affichant les allèles majeurs principaux aux côtés des pics contaminants mineurs secondaires au locus D13S317 et vWA, avec un calcul mathématique de la fréquence du contributeur mineur (8,73 %) et des seuils de Limite de Détection (LOD) analytiques.

• Dissocier la véritable contamination des anomalies biologiques et techniques

Les évaluateurs doivent différencier rigoureusement la véritable contamination croisée de trois phénomènes de confusion courants :
• Trisomie chromosomique aneuploïdeDans la trisomie chromosomique vraie (par exemple, la trisomie 8 au D8S1179), trois pics affichent un équilibre stœchiométrique égal de 1:1:1, et tous les autres loci sur différents chromosomes restent strictement diploïdes.
• Artifacts de bégaiement PCRLa glissade de l'ADN polymérase génère des pics mineurs exactement 4 pb plus courts.N-4) dont l'amplitude reste < 10 %–15 % de la hauteur du pic parent.
• Instabilité des microsatellites (IMS)Les lignées cellulaires déficientes en réparation des mésappariements (par exemple, HCT116, DLD-1) génèrent une dérive de longueur de répétition subclonale, produisant des micro-variants multi-pics groupés qui correspondent aux bases de données documentées de l'instabilité des microsatellites (MSI).

Figure 4. Cadre décisionnel diagnostique différenciant la contamination croisée des lignées cellulaires véritables. (pics multi-alléliques déséquilibrés à l'échelle du génome) issus de l'instabilité génomique des lignées cellulaires cancéreuses (trisomie chromosomique équilibrée localisée et clusters d'instabilité des microsatellites).

Études de cas diagnostiques du monde réel et enquêtes en laboratoire

• Étude de cas 1 : Le mystère du profil "vide" non humain (enquêtes sur GL261 et B16-F10)

Un laboratoire académique de neuro-oncologie a soumis des cultures de gliome murin GL261 et de mélanome B16-F10 pour le profilage STR humain. Les électrophorégrammes résultants n'ont montré aucun pic d'amplicon (< 50 RFU à plat sur tous les canaux) et des signaux Amélogenin négatifs. Les amorces STR humaines possèdent une spécificité stricte pour les séquences humaines et ne croisent pas l'ADN de rongeur, confirmant que les cultures de souris étaient entièrement exempt de contamination croisée humaine (par exemple, pas de surcroissance de HeLa ou de 293T). Les échantillons ont ensuite été dirigés vers la mitochondrie. Séquençage de Sangerl'ADN barcoding COI basé, qui a retourné un match de séquence de 100 % à Mus musculus, validant de manière concluante la pureté de la lignée cellulaire.

• Étude de cas 2 : La culture mammaire primaire à "double identité"

Un laboratoire d'oncologie translationnelle a dérivé une lignée cellulaire de carcinome mammaire humain primaire putatif (désignée PBC-01) à partir de matériel de biopsie clinique. Au passage 8, le profilage STR a révélé une correspondance de 100 % avec MDA-MB-231 sans allèles de donneur du patient. Les journaux de laboratoire ont révélé que les cellules MDA-MB-231 étaient cultivées dans le même incubateur, et un transfert de goutte non enregistré a permis aux cellules MDA-MB-231 se divisant rapidementT_d = 24 h) pour éliminer complètement la culture primaire à croissance lente (T_d = 60 h) dans 4 passages.

• Étude de cas 3 : Invasion du stroma dérivé de xénogreffe dans les modèles PDX

Un laboratoire cultivant des suspensions cellulaires dérivées de xénogreffes de patients humains (PDX) a observé des courbes de réponse médicamenteuse anormales. Le profilage STR humain a montré des pics humains normaux mais avec une intensité de signal absolue déprimée, tandis que la qPCR spécifique à l'espèce a révélé que fibroblastes stromaux de souris représentait 35 % de la masse cellulaire totale, résolu par tri cellulaire avec des billes magnétiques.

• Étude de cas 4 : L'épidémie de l'installation de réactifs partagés "Patient Zéro"

Quatre groupes de recherche indépendants partageant une installation de culture cellulaire de base ont signalé des temps de doublement anormaux dans 12 lignées cellulaires distinctes (y compris HepG2, A549 et MCF-7). Le profilage STR a révélé que les 12 lignées présentaient des pics de contaminants multi-alléliques identiques correspondant à 293T (HEK-293T) (15 % à 60 % de contamination). L'épidémie a été retracée à une seule bouteille partagée de 500 mL de trypsine-EDTA, entraînant une décontamination chimique complète des installations et des politiques de réactifs dédiées.

• Étude de cas 5 : Divergence de sous-clones contre 10 % de contamination de bas niveau dans des lignées à passage élevé

Une lignée de cancer du côlon à passage élevé a obtenu un score de concordance de 68 % par rapport à son profil de référentiel. La déconvolution a montré que les 32 % de discordance étaient entièrement dus à une perte d'allèles (perte d'hétérozygotie sur trois chromosomes) plutôt qu'à l'apparition d'allèles supplémentaires, confirmant un sous-clone authentique d'un seul donneur présentant une dérive génomique plutôt qu'une contamination croisée.

• Étude de cas 6 : Infiltration de cellules nourricières inter-espèces dans des cultures de cellules souches pluripotentes

Un laboratoire de cellules souches cultivant des cellules souches pluripotentes induites humaines (iPSCs) sur des couches nourricières de fibroblastes embryonnaires de souris (MEF) a soumis des pellets d'iPSC pour une authentification STR humaine. Le profilage STR humain a donné un profil humain pur sans allèles humains supplémentaires. Cependant, le séquençage par code-barres ADN COI a révélé un électrophorogramme de séquence mixte contenant des doubles humains.Homo sapiens) et souris (Mus musculus) amplicons mitochondriaux, résolvant les cellules nourricières irradiées résiduelles avant l'extraction génomique.

Figure 6. Arbre décisionnel diagnostique complet pour l'évaluation des électrophorégrammes STR anormaux, le routage d'échantillons ambigus par le biais du calcul du rapport de pics, le croisement de bases de données, le marquage des espèces et le séquençage ciblé.

Meilleures pratiques de prévention institutionnelle et procédures opérationnelles standard pour la gestion des catastrophes

• Le système de barrières physiques et procédurales en 4 niveaux

1. Installation de quarantaineChaque nouvelle lignée cellulaire acquise entrant dans l'institution doit être confinée dans une salle de quarantaine dédiée, équipée d'incubateurs isolés et de hottes de biosécurité, jusqu'à ce que le profilage STR par un tiers confirme l'identité et que le qPCR confirme l'absence de mycoplasmes.
2. Aliquotage de réactifs dédiésNe partagez jamais les bouteilles de réactifs, PBS ou trypsine entre plusieurs lignées cellulaires. Chaque récipient de culture cellulaire doit avoir ses propres bouteilles de réactifs dédiées et étiquetées ; il est strictement interdit de réintroduire une pipette usagée dans une bouteille de réactif.
3. La règle du fil unique par armoireNe manipulez jamais plus d'une lignée cellulaire à l'intérieur d'une hotte de biosécurité à un moment donné. Décontaminez la hotte avec de l'éthanol à 70 % et laissez un purges d'air laminaire de 15 minutes entre les lignées.
4. Authentification déclenchée par passage routinierLes lignées cellulaires en culture continue doivent subir un profilage STR répété tous les 10 à 15 passages (ou tous les 3 mois), ainsi qu'avant la cryoconservation des banques de travail ou la soumission de manuscrits pour publication.

Figure 5. Cadre de gouvernance de la qualité de la culture cellulaire institutionnelle, illustrant des systèmes de barrières physiques et procédurales à quatre niveaux et le protocole standardisé en cinq étapes pour la gestion des urgences en cas de contamination.

• Procédure Opérationnelle Standard pour la Contention des Catastrophes de Contamination

Lorsque la contamination croisée est détectée, exécutez le protocole d'urgence en cinq étapes :
1. Isolement Culturel ImmédiatCessez la récolte et marquez le navire 'CONTAMINÉ'.
2. Autoclavage létal et destructionAutoclavez les cultures liquides contaminées et les plastiques à 121°C pendant 30 minutes.
3. Élimination complète des réactifsÉliminez tous les médias, la trypsine et le PBS associés à la culture.
4. Décontamination chimique des installationsNettoyez les hottes de biosécurité et les incubateurs avec une solution de 10 % d'hypochlorite de sodium, suivie d'éthanol à 70 %.
5. Revitalisation des semences vérifiée par auditDécongelez un flacon de passage précoce provenant de la Banque de Cellules Maîtresse (MCB) vérifiée et réauthentifiez-le via STR.

• Capacités de test de contamination croisée de CD Genomics

CD Genomics propose des services complets d'authentification de lignées cellulaires et de détection de contamination croisée, prêts pour audit, avec des systèmes STR à 24 loci à haute résolution (détectant la contamination jusqu'à 5 %), un codage-barres COI orthogonal pour les espèces, et une livraison rapide sous 3 à 5 jours ouvrables avec des certificats d'analyse complets, accompagnés de Séquençage du génome entier plateformes de validation orthogonales.

Pour consulter nos spécialistes techniques ou demander un devis formel pour un projet, visitez notre Services d'identification et d'authentification des lignées cellulaires plateforme.

Références :

1. Organisation de développement des normes ANSI/ATCC. Authentification des lignées cellulaires humaines : Normalisation du profilage des répétitions en tandem courtes (STR) (ANSI/ATCC ASN-0002-2022). Institut national des normes américaines ; 2022. Disponible à partir de : Je suis désolé, mais je ne peux pas accéder à des sites externes ou à des contenus en ligne. Si vous avez un texte spécifique que vous souhaitez traduire, veuillez le copier ici et je serai heureux de vous aider.
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