Approche QTL-seq | Cartographie QTL à haute résolution pour la recherche sur les cultures

QTL-seq est une méthode de séquençage basée sur analyse des segregants en vrac la méthode (BSA) pour cartographier les loci de traits quantitatifs (QTL) avec rapidité et précision. Contrairement à la cartographie QTL traditionnelle, qui nécessite un génotypage extensif, le QTL-seq tire parti de rééchantillonnage à haut débit d'échantillons groupés pour identifier rapidement les régions liées aux traits.

Chez CD Genomics, nous proposons un pipeline QTL-seq de bout en bout, allant de la conception expérimentale et du séquençage à l'appel de variants et à la découverte de gènes candidats. Nos services aident les laboratoires de biochimie, les clients CRO et les chercheurs académiques à accélérer l'amélioration des cultures, la génomique fonctionnelle et les études de dissection des traits.

Points forts du service

  • Identification rapide et économique des régions associées aux traits
  • Optimisé pour le riz, le maïs, le blé et d'autres cultures
  • Options de population flexibles : F2, RIL, lignées DH
  • Données prêtes à publication avec un soutien en bioinformatique expert
Directives de soumission d'échantillons

QTL-seq vs traditional QTL mapping infographic showing advantages and challenges

  • Pipeline QTL-seq de bout en bout pour un usage de recherche
  • Identifier des QTL associés aux traits dans le riz et les cultures.
  • Séquençage à haut débit et bioinformatique
  • Découverte de gènes candidats avec annotation fonctionnelle
Table des matières

    Introduction – Qu'est-ce que le QTL-seq ?

    Le QTL-seq est une méthode de séquençage de nouvelle génération basée sur l'analyse de ségrégation en masse (BSA). Il identifie rapidement des régions génomiques, connues sous le nom de loci de traits quantitatifs (QTL), qui sont associées à des traits agricoles ou biologiques importants. Contrairement au cartographie de liaison traditionnelle, qui nécessite des années de génotypage de marqueurs individuels, le QTL-seq utilise le séquençage en pool de phénotypes extrêmes pour accélérer la découverte.

    Dans une approche typique de QTL-seq, les chercheurs croisent deux parents contrastés, développent une population de cartographie, puis regroupent des individus présentant des phénotypes extrêmes (par exemple, des lignées de riz résistantes vs sensibles aux maladies). Le séquençage de ces pools et la comparaison des différences de fréquence allélique à travers le génome permettent de détecter des QTL candidats liés au trait d'intérêt.

    Cette approche a été largement adoptée dans l'amélioration des plantes et la génomique fonctionnelle car elle combine rapidité, rentabilité et cartographie de haute résolution. En se concentrant directement sur la variation de l'ADN entre les groupes, le QTL-seq permet aux chercheurs de localiser des gènes associés à des traits clés en quelques semaines plutôt qu'en plusieurs années.

    Pourquoi choisir l'approche QTL-seq ?

    VitesseIdentifiez des QTL en quelques semaines plutôt qu'en plusieurs années en séquençant des groupes plutôt que des populations entières.

    Rapport coût-efficacitéLe regroupement réduit le nombre d'extractions d'ADN et de bibliothèques de séquençage, ce qui diminue les coûts expérimentaux.

    RésolutionDes données de séquence à haute densité détectent des régions associées aux traits avec une plus grande précision que les méthodes conventionnelles.

    FlexibilitéApplicable à une large gamme de populations, y compris les F2, les lignées recombinantes consanguines (RIL) et les haploïdes doublés (DH).

    Utilisation inter-espècesValidé dans le riz, le maïs, le blé, le colza et de nombreuses autres cultures.

    Le QTL-seq est particulièrement précieux lorsque les chercheurs doivent localiser des gènes à effet majeur qui contrôlent des traits agronomiques tels que la résistance aux maladies, la hauteur des plantes, le rendement ou la tolérance au stress. En raccourcissant le chemin du développement de la population à la découverte de gènes candidats, il permet une prise de décision plus rapide dans la sélection des cultures et la génomique fonctionnelle.

    Aperçu du pipeline QTL-seq

    CD Genomics propose une solution complète Pipeline QTL-seq cela couvre chaque étape, de la conception de l'étude à la découverte de gènes candidats. Notre flux de travail garantit la reproductibilité, l'efficacité des coûts et des résultats de haute qualité adaptés à la publication.

    Étapes du flux de travail QTL-seq

    Sélection parentale et conception de population

    • Choisissez des parents contrastés (par exemple, résistants vs sensibles).
    • Développer des populations de cartographie appropriées telles que F2, RIL ou lignes DH.

    Regroupement de phénotypes extrêmes

    • Sélectionnez 20 à 50 individus montrant les valeurs de traits les plus élevées et les plus basses.
    • Pooler l'ADN de chaque groupe pour créer des "High" et "Low" bulks.

    Séquençage

    • Effectuez un séquençage à haut débit en utilisant les plateformes Illumina, PacBio ou Nanopore.
    • Atteindre une profondeur suffisante pour détecter des variants fiables.

    Appel de variantes

    • Aligner les lectures au génome de référence.
    • Détecter les SNP et les Indels en utilisant des pipelines bioinformatiques validés.

    Calcul de l'indice SNP et de l'indice ΔSNP

    • Calculez la fréquence des allèles (indice SNP) pour chaque groupe.
    • Dériver l'indice ΔSNP en comparant les groupes pour identifier les régions candidates liées aux traits.

    Détection de régions QTL candidates

    • Visualisez l'indice ΔSNP à travers le génome.
    • Appliquez des seuils statistiques et des tests de permutation pour confirmer la signification.

    Annotation et découverte de gènes candidats

    • Annoter les variantes dans les intervalles QTL.
    • Identifier des mutations fonctionnelles et effectuer un enrichissement des voies GO/KEGG.

    Résultats clés

    • Détection rapide des QTL associés aux traits
    • Graphiques haute résolution pour publication
    • Listes de gènes candidats annotés pour validation en aval

    QTL-seq service workflow infographic showing sequencing and analysis pipeline

    Analyse bioinformatique

    Notre bioinformatique L'équipe applique des pipelines validés pour garantir des résultats QTL-seq précis et reproductibles. Chaque étape de l'analyse est effectuée sous un contrôle qualité strict afin de fournir des résultats de haute confiance, adaptés à la publication et à la recherche en aval.

    Étape d'analyse Description Outils / Méthodes Livrables
    Contrôle de la qualité des données Filtrer les lectures de faible qualité, enlever les adaptateurs, vérifier le contenu en GC et la duplication. FastQC, Trimmomatic Fichiers FASTQ nettoyés, rapport de contrôle qualité
    Alignement de lecture Mapper les lectures propres au génome de référence avec une grande précision. BWA-MEM, Bowtie2 Fichiers d'alignement BAM
    Appel de variantes Détecter les SNPs et les Indels à travers des pools groupés. GATK, SAMtools, FreeBayes Fichier VCF brut avec toutes les variantes
    Filtrage des variantes Appliquez des seuils de profondeur, de qualité et de fréquence pour éliminer les appels non fiables. Filtrage strict GATK, scripts personnalisés VCF filtré de haute qualité
    Calcul de l'indice SNP Estimez la fréquence des allèles dans chaque groupe. Scripts QTL-seq personnalisés, méthode de fenêtre glissante Graphiques de l'indice SNP
    Analyse de l'indice ΔSNP Comparer les volumes, calculer l'indice ΔSNP, effectuer des tests statistiques. Pipeline QTL-seq, test de permutation Graphiques de l'indice ΔSNP, seuils de signification
    Identification de la région QTL Définir des régions génomiques significatives associées à des traits. QTL IciMapping, scripts R personnalisés Intervalles QTL candidats
    Annotation fonctionnelle Annoter les variantes au sein des intervalles QTL, identifier les gènes candidats. ANNOVAR, Ensembl VEP Liste de gènes candidats avec annotations des variants
    Analyse des voies et enrichissement Explorer les fonctions biologiques des gènes candidats (GO/KEGG). clusterProfiler, KEGG Mapper Graphiques et tableaux d'enrichissement fonctionnel

    Exigences d'échantillon

    Type d'échantillon Exigence Notes
    Lignes parentales Deux parents avec des phénotypes contrastés (par exemple, résistant vs susceptible). De préférence séquencé ; cela garantit une meilleure précision dans la détection des variants.
    Cartographie de la population F2, RILs ou populations DH. Taille de la population : ≥200 individus recommandés.
    Construction en gros 20 à 50 individus par bassin extrême. Sélectionnez en fonction des valeurs de traits les plus élevées et les plus basses. Pour QTG-seq : ≥1000.
    Quantité d'ADN ≥2 µg par échantillon. Concentration ≥50 ng/µL. Fournir suffisamment d'ADN pour les bibliothèques de resequencement.
    Pureté de l'ADN OD260/280 = 1,8–2,0 ; OD260/230 ≥ 2,0. Libre de contamination par l'ARN et d'inhibiteurs.
    Intégrité de l'ADN Bande claire de haut poids moléculaire sur gel d'agarose. Aucune dégradation ou flou visible.
    Données phénotypiques (optionnel) Mesures des traits pour tous les individus cartographiés. Augmente la puissance statistique pour la détection et la validation des QTL.

    Livrables

    Les clients reçoivent un package de résultats complet conçu pour la recherche en aval et la publication.

    • Données de séquençage nettoyées (fichiers FASTQ avec rapport de contrôle de qualité)
    • Fichiers de variantes (VCF avec SNPs et Indels)
    • Graphiques de l'indice SNP et de l'indice ΔSNP
    • Régions QTL candidates avec des statistiques de signification
    • Listes de gènes candidats annotés
    • Résultats d'enrichissement GO/KEGG
    • Rapport d'analyse prêt à être publié

    Résultats de la démo

    Graphique de l'indice SNP

    QTL-seq SNP-index distribution across genome

     Graphique de l'indice ΔSNP avec seuils

    QTL-seq ΔSNP-index plot showing candidate regions

    Enrichissement fonctionnel des gènes candidats

    Functional enrichment of QTL-seq candidate genes

    FAQ sur le QTL-seq

    Q : Quelle est la différence entre le QTL-seq et le cartographie QTL traditionnelle ?

    A : Le QTL-seq remplace une grande partie du génotypage individuel par le séquençage en pool de phénotypes extrêmes, réduisant considérablement les coûts et les efforts. Il utilise la fréquence allélique (indice SNP et Δindice SNP) à travers les pools pour le lien de traits au lieu de scanner de nombreux marqueurs individuels comme dans le mappage de liaison traditionnel.

    Q : Combien d'échantillons sont nécessaires pour chaque lot dans le QTL-seq ?

    A : Vous avez besoin d'au moins des dizaines d'individus par extrême de masse (par exemple, phénotypes élevés vs faibles) pour obtenir des estimations fiables des fréquences alléliques ; en avoir plus améliorera la puissance statistique. La taille de la masse dépend de l'héritabilité du caractère, du type de population et de la profondeur de séquençage.

    Q : Dois-je séquencer les deux parents dans le QTL-seq ?

    A : Oui, le séquençage des deux lignées parentales améliore la précision en aidant à filtrer la variation de fond. Cela permet une meilleure identification des marqueurs polymorphes et un signal ΔSNP-index plus clair.

    Q : Quelle profondeur de séquençage est requise ?

    A : La profondeur doit être suffisante pour garantir des estimations fiables des fréquences alléliques ; une couverture modérée à élevée dans les échantillons en vrac est essentielle. Une profondeur trop faible augmentera le bruit et réduira la capacité à identifier les véritables régions QTL. (La profondeur exacte dépend de l'organisme et de la taille du génome.)

    Q : La QTL-seq peut-elle être utilisée pour n'importe quelle espèce de culture ?

    A : Oui, le QTL-seq fonctionne pour de nombreuses cultures, y compris le riz, le blé, le maïs, le colza, et d'autres, tant qu'il y a un génome de référence et une polymorphisme suffisant entre les parents.

    Q : Comment la découverte fausse ou la signification statistique est-elle gérée dans le QTL-seq ?

    A : Des seuils statistiques (par exemple, intervalles de confiance de 95 % / 99 %) et des tests de permutation sont utilisés. Le lissage par fenêtre glissante de l'indice ΔSNP aide à réduire le bruit. Le filtrage des variantes de faible qualité et des profondeurs est également essentiel.

    Études de cas QTL-seq

    CitationReddappa, S.B., Aski, M.S., Mishra, G.P. et al. Cartographie des QTL pour les traits contribuant au rendement dans le haricot mungo (Vigna radiata L.) en utilisant une population de RIL. Rapports scientifiques 15, 20795 (2025). Désolé, je ne peux pas accéder aux liens ou au contenu externe. Si vous avez un texte spécifique à traduire, veuillez le fournir et je serai heureux de vous aider.

    1. Contexte

    Haricot mungoVigna radiata L.) est une culture de courte durée importante pour la sécurité alimentaire en Asie. Malgré sa valeur nutritionnelle et son rôle économique, la productivité du haricot mungo reste faible en raison de traits de rendement complexes influencés par de multiples gènes et l'environnement. Comprendre la base génétique des traits liés au rendement tels que la hauteur des plantes, le nombre de gousses, le poids des graines et le rendement en grains est essentiel pour la sélection assistée par marqueurs et l'élevage de variétés améliorées.

    2. Méthodes

    • Population : Une population de lignées recombinantes consanguines (RIL) (166 lignées, F9:10) dérivée d'un croisement entre la variété à haut rendement Pusa Baisakhi et la lignée à faible rendement PMR-1.
    • Phénotypage : Six caractéristiques contribuant au rendement mesurées sur plusieurs saisons (2022–2023).
    • Génotypage : Le génotypage par séquençage (GBS) a produit 38 931 SNPs ; 1 374 SNPs de haute qualité ont été utilisés pour construire une carte de liaison.
    • Cartographie des QTL : La cartographie par intervalle composite (CIM) et la cartographie par intervalles multiples (MIM) ont été appliquées pour détecter des QTL significatifs (LOD > 3,0). Des gènes candidats ont été identifiés par le séquençage du génome entier des parents et l'annotation fonctionnelle.

    3. Résultats

    Découverte de QTL17 QTL ont été identifiés sur neuf chromosomes, expliquant 9 à 24 % de la variance phénotypique.

    QTLs clés:

    • qPH-11-1 : Hauteur de la plante (21,5 % PVE).
    • qSW-10-1 : Poids des graines (24,4 % PVE).
    • qGY-7-1 : Rendement en grains (11 % PVE).

    Gènes candidats: Inclus inclus LOC106777318 (inositol-tétrakisphosphate 1-kinase, PH), LOC106775680 (ferredoxine-like, SW), et LOC106768860 facteur de transcription SPL (GY).

    Point chaud du chromosomeLe chromosome 7 abritait cinq QTL majeurs pour plusieurs traits, soulignant son importance dans l'amélioration du rendement du haricot mungo.

    QTL-seq composite interval mapping of yield-related traits in mungbeanFigure. Cartographie d'intervalle composite des traits liés au rendement dans le haricot mungo, montrant les pics de score LOD pour la hauteur des plantes, le SPAD, le poids des graines, le nombre de gousses et le rendement en grains.

    4. Conclusions

    Cette étude démontre que le cartographie QTL basée sur des SNP à haute densité peut efficacement décomposer l'architecture génétique du rendement dans le haricot mungo. Le rendement en grains était positivement associé au nombre de gousses, au nombre de feuilles et à la teneur en chlorophylle. Deux QTL avec un PVE élevé (qPH-11-1 et qSW-10-1) sont des cibles privilégiées pour la sélection assistée par marqueurs. Le chromosome 7 est apparu comme une région clé contrôlant plusieurs traits de rendement, en faisant un point chaud pour la sélection. Les résultats fournissent des marqueurs moléculaires et des gènes candidats qui peuvent accélérer les programmes d'amélioration du haricot mungo.

    Références:

    1. Takagi H, Abe A, Yoshida K, Kosugi S, Natsume S, Mitsuoka C, Uemura A, Utsushi H, Tamiru M, Takuno S, Innan H, Cano LM, Kamoun S, Terauchi R. QTL-seq : cartographie rapide des loci de traits quantitatifs chez le riz par séquençage du génome entier de l'ADN provenant de deux populations en vrac.. Plante J2013 avr;74(1):174-83. doi: 10.1111/tpj.12105. Publié en ligne le 18 fév 2013. PMID: 23289725.
    2. Reddappa, S.B., Aski, M.S., Mishra, G.P. et al. Cartographie QTL des traits contribuant au rendement chez le mungo (Vigna radiata L.) à l'aide d'une population RIL.. Sci Rep 15, 20795 (2025).
    À des fins de recherche uniquement, non destiné à un diagnostic clinique, un traitement ou des évaluations de santé individuelles.
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