Séquençage métagénomique viral

En tant que fournisseur expérimenté de services NGS et partenaire d'Illumina, CD Genomics s'engage à offrir des quantités sans précédent de données de séquence permettant des approches analytiques rapides et innovantes avec des solutions rentables. Nous avons une solide expertise dans la fourniture d'un service de séquençage métagénomique viral fiable et impartial en utilisant des séquenceurs à haut débit de pointe, des stratégies de séquençage, et bioinformatique pipelines.

Introduction au séquençage métagénomique viral

Les virus sont les entités biologiques les plus abondantes au monde, dépassant le nombre de cellules microbiennes dans la plupart des environnements dans un rapport de 10:1. Les virus habitent constamment notre corps, et les hôtes asymptomatiques ne font pas exception. Cette vision émergente souligne la nécessité d'explorer le virome. La métagénomique virale peut fournir des informations sur la composition et la structure des communautés virales. Le profilage de la composition taxonomique des communautés virales est important non seulement pour la recherche fondamentale, mais aussi pour la science clinique et la pratique.

Cependant, les communautés virales sont difficiles à caractériser car il n'existe pas de gène unique partagé par tous les génomes viraux, ce qui limite l'application des méthodes analogues utilisées chez les bactéries pour le profilage de l'ADN ribosomal. La faible abondance de l'ADN libre et cellulaire constitue un autre défi. Séquençage shotgun métagénomique et RNA-seq Il existe deux approches pour la caractérisation des communautés virales. Le séquençage direct peut entraîner un fort bruit de fond de matériel génétique. Par conséquent, des procédures supplémentaires sont nécessaires pour concentrer et purifier les particules virales (PV). Plusieurs méthodes d'enrichissement viables ont été suggérées, y compris la filtration, l'ultracentrifugation, le traitement par nucléases, l'amplification par déplacement multiple (ADM), la bibliothèque de tirage amplifiée par lien (BTAL) et l'approche PCR aléatoire.

Avantages du séquençage métagénomique viral

  • Pas besoin de cultures ou de tests de laboratoire d'anticorps.
  • Informations complètes sur la biodiversité communautaire, la taxonomie et la fonction
  • Les applications prometteuses incluent la découverte de virus et l'identification de pathogènes viraux associés à l'horticulture, à la médecine vétérinaire et à la santé humaine, en particulier pour les cas difficiles à diagnostiquer.

Application du séquençage métagénomique viral

(1) Traitement des maladies : L'étude de la diversité virale, la découverte de virus inconnus, l'analyse de détection de virus/bactériophages spécifiques et l'interaction entre les bactéries et les bactériophages (dans des aspects tels que l'intestin, la peau, l'environnement, etc. et en relation avec la santé) sont des éléments vitaux à aborder. L'investigation des relations entre les virus et les maladies (telles que les maladies métaboliques, les maladies gastro-intestinales, les maladies respiratoires, les allergies, les maladies infectieuses, les maladies buccales et les tumeurs) peut grandement augmenter notre compréhension. Des techniques comme la thérapie par bactériophages et la sensibilisation des bactéries résistantes aux antibiotiques pourraient potentiellement stimuler les réponses immunitaires.

(2) Sécurité alimentaire : La surveillance des virus dans les aliments, la compréhension de la diversité virale d'origine alimentaire, l'investigation des agents pathogènes transmis par les aliments et la surveillance des virus pendant le traitement des aliments sont des mesures clés. La traçabilité des incidents de contamination virale et l'étude du lien entre les virus et le microbiome alimentaire peuvent contribuer de manière significative à garantir la sécurité alimentaire.

(3) Industrie du bétail : La gestion des maladies dans l'élevage, comme le traitement de la diarrhée, de la fièvre porcine, de la fièvre aphteuse, des maladies zoonotiques et l'analyse des fèces d'animaux sauvages, est essentielle pour maintenir la santé du bétail.

(4) Surveillance des maladies infectieuses : La surveillance des virus environnementaux peut fournir des indices de détection précoce et de surveillance pour les épidémies de maladies, contribuant ainsi de manière significative aux initiatives de santé publique.

(5) Ingénierie environnementale : Dans les domaines de l'ingénierie environnementale tels que le traitement des eaux usées et le contrôle de la pollution, comprendre les communautés virales dans les masses d'eau aide à évaluer l'efficacité des traitements et l'impact environnemental. Cela s'applique à divers environnements comme les systèmes de transport public, les hôpitaux, les océans, les eaux douces, l'air et les glaciers.

(6) Découverte de médicaments : L'étude du virome peut révéler des virus susceptibles d'interagir avec les hôtes, fournissant des indices pour la découverte de nouveaux médicaments.

(7) Agriculture : L'étude de la diversité virale des plantes et des sols pourrait soutenir le développement de biopesticides dans le secteur agricole.

Flux de travail de séquençage métagénomique viral

Notre équipe d'experts hautement expérimentés exécute la gestion de la qualité en suivant chaque procédure pour garantir des résultats complets et précis. Le flux de travail général pour le séquençage shotgun métagénomique viral est décrit ci-dessous. En résumé, les étapes de base impliquées dans la métagénomique virale comprennent l'isolement et la purification des particules virales par filtration de taille ou centrifugation basée sur la densité, l'amplification indépendante de la séquence de l'acide nucléique viral, le séquençage shotgun ou RNA-seq et des analyses appariées sur la diversité, la taxonomie et la fonction à l'aide d'une batterie d'outils bioinformatiques fiables.

Workflow Diagram of T Viral Metagenomic Sequencing

Spécifications du service

Exigences d'échantillon
  • Sources d'échantillons incluant des échantillons environnementaux et cliniques.
  • Contrôle de qualification des échantillons
  • Isolement et purification des VPs et amplification indépendante de la séquence
Plateformes de séquençage
  • Plateformes HiSeq, paire de lectures de 150 pb, MGI DNBSEQ-T7/DNBSEQ-G400
  • Plus de 2 Go de données brutes par échantillon
  • Plus de 80 % des bases avec un score de qualité ≥Q30
  • SMRT de PacBio La technologie est également disponible pour le séquençage de longs fragments, ce qui fournit des séquences plus précises et continues.
Analyse bioinformatiqueNous proposons plusieurs analyses de bioinformatique personnalisées :
  • L'élimination de la contamination liée à l'hôte et à la bactérie
  • Alignement de nucléotides (VirFinder, VirusFinder et BLAST)
  • Alignement de protéines (RefSeq)
  • De nouveau assemblage, identification taxonomique, graphique de couverture, et analyse phylogénétique
  • …et plus encore

Pipeline d'analyse

The Data Analysis Pipeline of Viral Metagenomic Sequencing

Livrables

  • Contrôle de qualité et suppression d'hôte
  • Analyse des espèces de lectures
  • Assemblée
  • Analyse des espèces assemblées
  • Analyse fonctionnelle
  • Prédiction des hôtes de phages

En plus du séquençage métagénomique viral qualifié, nous offrons une assistance, y compris la conception expérimentale, la détermination de la plateforme de séquençage appropriée, les outils logiciels et les méthodologies d'analyse, pour répondre aux besoins de votre projet. Si vous avez des exigences supplémentaires ou des questions, n'hésitez pas à nous contacter, nos spécialistes expérimentés se feront un plaisir de vous aider à résoudre vos interrogations.

Références :

  1. Li Y, et al. VIP : un pipeline intégré pour la métagénomique de l'identification et de la découverte de virus. Rapports scientifiques, 2016, 6 : 3774
  2. Rampelli, S. et al. ViromeScan : un nouvel outil pour le profilage communautaire viral métagénomique. BMC Genomics2016, (17) :165.
  3. Lewandowska D W, Zagordi O, Geissberger F D, et al. Optimisation et validation de la préparation des échantillons pour le séquençage métagénomique des virus dans des échantillons cliniques. Microbiome, 2017, 5(1) : 94.

Résultats de la démo

Les résultats partiels sont affichés ci-dessous :

Distribution of per-base sequence content across samples.

Par contenu de séquence de base.

GC content distribution for each individual sequence.

Contenu en GC par séquence.

Merged abundance data for all samples.

Abondance_fusionnée.

Family-level abundance heatmap showing sample variation.

Carte de chaleur d'abondance au niveau de la famille.

KEGG pathway classification of sample data.

Classification KEGG.

CAZy functional classification of carbohydrate-active enzymes.

Classification des fonctions CAZy.

Boxplot analysis using bray Curtis (A), binary jaccard (B), unweighted unifrac (C), and weighted unifrac (D).

Analyse des boxplots basée sur Bray-Curtis (A), Jaccard binaire (B), Unifrac non pondéré (C) et Unifrac pondéré (D).

PCoA analysis based on Bray Curtis, Jaccard, and UniFrac distances(C,D).

Analyse PCoA basée sur Bray-Curtis (A), Jaccard binaire (B), unweighted unifrac (C) et weighted unifrac (D).

UPGMA clustering tree showing sample relationships.

Arbre de regroupement UPGMA.

FAQs sur le séquençage métagénomique viral

1. Quelles sont les approches pour le séquençage du génome entier des agents pathogènes ?

Il existe actuellement trois approches principales pour séquençage du génome entier de pathogènes, c'est-à-dire, séquençage métagénomique, séquençage d'amplicons PCR et séquençage par enrichissement ciblé (Figure 1). Le séquençage métagénomique direct fournit une représentation précise et intégrée des séquences au sein d'un échantillon. Le séquençage d'amplicons PCR effectue des réactions PCR pour enrichir le génome viral, ce qui augmente considérablement la charge de travail pour les grands génomes mais réduit les coûts. Le séquençage par enrichissement ciblé utilise des sondes nucléotidiques spécifiques aux virus liées à une phase solide pour enrichir le génome viral dans une seule réaction, ce qui réduit la charge de travail mais augmente le coût par rapport au séquençage des amplicons PCR. Les avantages et les inconvénients sont répertoriés dans le Tableau 1. Il montre que le séquençage métagénomique viral présente des avantages uniques pour étudier les pathogènes et caractériser la diversité virale dans des échantillons environnementaux et cliniques.

Figure 1. Primary Methods Employed for Viral Genome Sequencing. (Houldcroft et al., Clinical and biological insights from viral genome sequencing. 2017) Figure 1. Les principales approches utilisées pour le séquençage du génome viral (Houldcroft et al. 2016).

Tableau 1. Avantages et inconvénients des différentes méthodes de séquençage des génomes viraux (Houldcroft et al. 2016).

Méthode Avantages Inconvénients
Métagénomique
  • Préparation d'échantillons simple et économique
  • Séquencez des génomes nouveaux et mal caractérisés.
  • Identifier un agent pathogène sous-jacent potentiel
  • Un faible nombre de cycles de PCR entraîne peu de biais et de mutations.
  • Réflecte la variation in vivo
  • Rapidité
  • Coût de séquençage élevé
  • Sensibilité relativement faible au pathogène cible.
  • Analyse de grandes quantités de données
  • Les agents pathogènes hors cible peuvent soulever des problèmes éthiques et diagnostiques.
amplicon PCR
  • Coûts de séquençage réduits
  • Très sensible et bien couvert même à faible charge pathogène.
  • Biais de PCR et mutation
  • Intensif en main-d'œuvre
  • Capacité limitée à identifier de nouveaux pathogènes
Enrichissement ciblé
  • Spécificité plus élevée
  • Des sondes qui se chevauchent augmentent la tolérance aux erreurs d'appariement des amorces individuelles.
  • Réfléter la variation in vivo
  • Coût élevé et expertise technique pour la préparation des échantillons
  • Impossible de séquencer de nouveaux agents pathogènes.
  • Couverture faible ou incomplète
  • Coût et temps pour générer des ensembles de sondes

2. Quel est le pipeline bioinformatique général pour le séquençage métagénomique viral ?

Après le séquençage, les lectures NGS brutes sont d'abord prétraitées par la suppression des adaptateurs, des séquences de faible qualité et de faible complexité, suivie d'une soustraction computationnelle des lectures liées à l'hôte. Dans un mode rapide, les virus sont identifiés par alignement avec la base de données de nucléotides ViPR/IRD. Dans un mode plus sensible, les lectures de bactéries et d'ARN ribosomal apparentés sont supprimées avant l'alignement avec la base de données des virus. Les lectures non appariées sont ensuite alignées avec une base de données de protéines virales (base de données NCBI RefSeq). Ensuite, l'identification taxonomique (Taxl), le graphique de couverture (Covplot), de novo l'assemblage (k-mer multiple) et l'analyse phylogénétique (PhyGo) peuvent être effectués.

Références :

  1. Houldcroft C J, Beale M A, Breuer J. Perspectives cliniques et biologiques issues du séquençage du génome viral. Nature Reviews Microbiology, 2017, 15(3) : 183-192.
  2. Li Y, Wang H, Nie K, et al. VIP : un pipeline intégré pour la métagénomique de l'identification et de la découverte de virus. Scientific reports, 2016, 6.

Études de cas sur le séquençage métagénomique viral

Détection et séquençage du virus Zika à partir du liquide amniotique de fœtus présentant une microcéphalie au Brésil : une étude de cas

Journal : The Lancet Infectious Diseases

Facteur d'impact : 19,864

Publié : 17 février 2016

Arrière-plans

Les cas de microcéphalie au Brésil en 2015 étaient 20 fois plus nombreux que les années précédentes. Les données épidémiologiques suggèrent que l'incidence de la microcéphalie au Brésil pourrait être associée au virus Zika. Les auteurs ont prélevé des échantillons de liquide amniotique de deux femmes enceintes au Brésil dont les fœtus avaient été diagnostiqués avec une microcéphalie, dans le but d'enquêter sur la cause de la microcéphalie.

Méthodes

Histoires de cas :
  • Femmes enceintes présentant des symptômes d'infection par le virus Zika.
  • Fœtus diagnostiqué avec microcéphalie
Échantillonnage :
  • 5 mL d'échantillons de liquide amniotique de deux femmes à la 28e semaine de grossesse.
  • Tests sérologiques
  • ELISA
Séquençage :
  • Purification des particules virales
  • PCR quantitative par transcription inverse
  • Séquençage métagénomique viral
Analyse des données:
  • PRINSEQ
  • EXPLOSION
  • RefSeq
  • De nouveau assemblage
  • Analyse phylogénétique

Résultats

Assemblage du génome du virus Zika

Après avoir éliminé la contamination cellulaire, 288 904 séquences présentaient une similarité avec des génomes viraux, et 683 séquences correspondaient au génome du virus Zika. La figure 1 montre le génome complet du virus Zika isolé du patient 1 avec annotation des gènes.

Figure 1. BLAST Atlas Comparison of Zika Virus Genomes. The green circle represents the complete Brazilian Zika virus isolated from patient 1. The red circle represents the Senegal strain of Zika virus. The blue circle represents the Uganda strain. (Calvet et al. Detection and sequencing of Zika virus from amniotic fluid of fetuses with microcephaly in Brazil: a case study. 2016)Figure 1. Diagramme de l'Atlas BLAST génomique comparatif du virus Zika. Le cercle vert correspond au virus Zika brésilien complet isolé du patient 1. Le cercle rouge correspond à la souche du virus Zika du Sénégal. Le cercle bleu correspond à la souche d'Ouganda.

2. Analyse phylogénétique

Les analyses phylogénétiques ont été réalisées avec la région codante pour les gènes de l'enveloppe (Figure 2) et NS5 (Figure 3), respectivement. La région géographique de la souche du virus Zika brésilien n'a pas pu être déduite en raison de limitations d'échantillonnage, mais elle semblait plus étroitement liée à celle de la Polynésie française qu'aux souches africaines.

Les distributions géographiques et chronologiques des lignées du virus Zika indiquent que la souche d'Asie du Sud-Est pourrait s'être isolée génétiquement des souches africaines pendant environ 50 ans. Ce schéma a été confirmé par la distance génétique entre les nouvelles séquences du virus Zika brésilien et le génome du virus Zika ougandais (Figure 4).

Figure 2. Maximum Likelihood Phylogenies of the Envelope Genomic Region from Brazilian Zika Virus. (Calvet et al. Detection and sequencing of Zika virus from amniotic fluid of fetuses with microcephaly in Brazil: a case study. 2016)Figure 2. Topologies de vraisemblance maximale de la région génomique de l'enveloppe du virus Zika brésilien.

Figure 3. Maximum Likelihood Phylogenies of the NS5 Genomic Region from Brazilian Zika Virus. (Calvet et al. Detection and sequencing of Zika virus from amniotic fluid of fetuses with microcephaly in Brazil: a case study. 2016)Figure 3. Topologies de vraisemblance maximale de la région génomique NS5 du virus Zika brésilien.

Figure 4. Maximum Likelihood Phylogeny of Brazilian Zika Virus, Other Flaviviridae Genomes, and an Alphavirus Genome. DENV = dengue virus, JEV = Japanese encephalitis virus. YFV = yellow fever virus. ZIKA = Zika virus. (Calvet et al. Detection and sequencing of Zika virus from amniotic fluid of fetuses with microcephaly in Brazil: a case study. 2016) Figure 4. Phylogénie par maximum de vraisemblance du virus Zika brésilien, d'autres génomes de Flaviviridae et d'un génome d'alphavirus. DENV=virus de la dengue, JEV=virus de l'encéphalite japonaise. YFV=virus de la fièvre jaune. ZIKA=virus Zika.

L'infection par le virus Zika pourrait se produire par transmission transplacentaire.

Cet article a été le premier à isoler l'ensemble du génome du virus Zika à partir du liquide amniotique, ce qui a suggéré que l'infection par le virus Zika pourrait se produire par transmission transplacentaire.

Référence :

  1. Calvet G, Aguiar R S, Melo A S O, et al. Détection et séquençage du virus Zika à partir du liquide amniotique de fœtus atteints de microcéphalie au Brésil : une étude de cas. The Lancet des maladies infectieuses, 2016, 16(6) : 653-660.

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