Comparaison de séquençage d'amplicons 18S vs ITS : Attributs, Applications et Sélection
Dans les eucaryotes recherche sur le microbiomeLes gènes d'ARNr 18S et les régions d'espacement transcrit interne (ITS) servent de marqueurs fondamentaux pour le séquençage d'amplicons. Leurs attributs techniques et applications pratiques divergent considérablement : les séquences 18S, présentant des régions conservées et variables, excellent dans le profilage des communautés eucaryotes inter-domaines mais peinent à atteindre une résolution au niveau des espèces. En revanche, les régions ITS évoluent rapidement, ce qui en fait la norme d'or pour la classification des espèces et sous-espèces fongiques, bien que leur utilité soit limitée aux études spécifiques aux champignons.
Cette analyse examine quatre dimensions critiques : le positionnement technique, les comparaisons d'attributs, les applications dans le monde réel et les cadres de sélection, afin de démontrer comment ces marqueurs se complètent en pratique. Nous explorons également les tendances émergentes, telles que le séquençage multi-marqueurs et la bioinformatique pilotée par l'IA.
Positionnement technique des séquences d'amplicons 18S et ITS
Le choix entre le séquençage du gène de l'ARNr 18S et le région ITS détermine l'étendue et la profondeur de la recherche. En tant que deux marqueurs microbiens eucaryotes représentatifs, l'18S couvre l'ensemble des domaines tandis que l'ITS se spécialise dans la classification précise, formant des systèmes techniques complémentaires dans la recherche écologique. Ci-dessous, nous analysons leurs différences fondamentales en termes de positionnement fonctionnel et de hiérarchies de classification.
Gène 18S rRNA : Le "Langage Universel" des Eucaryotes
En tant que composant central des sous-unités ribosomiques petites eucaryotes, le gène 18S contient des structures en tige et boucle hautement conservées (pour la classification inter-domaines) et des régions variables (pour la différenciation au niveau du genre/famille). Cette caractéristique le rend idéal pour analyser des eucaryotes divers, tels que les protistes, les champignons et les algues. Par exemple, dans la recherche sur le plancton marin, la technologie 18S peut simultanément distinguer des groupes éloignés tels que les Dinophyta et les Cryptophyta, révélant des caractéristiques communautaires macroscopiques. Cependant, sa longueur de séquence d'environ 1 800 pb peut introduire un biais PCR lors de l'amplification de fragments longs, et la résolution au niveau des espèces est souvent limitée par une variation insuffisante dans les régions variables.
Région ITS : L'"empreinte moléculaire" des champignons
Située entre les gènes d'ARNr 18S et 28S, la région ITS non codante évolue 5 à 10 fois plus rapidement que l'ARNr 18S. Ce taux de mutation rapide établit l'ITS comme le "standard d'or" pour la classification des espèces et sous-espèces fongiques. Par exemple, dans l'identification des champignons pathogènes des cultures, les séquences ITS peuvent différencier précisément les races physiologiques des champignons de la rouille du blé, fournissant des preuves moléculaires pour le contrôle des maladies. Cependant, la longueur de séquence hautement variable de l'ITS (100-1000 pb) provoque souvent des artefacts chimériques lors de l'amplification, et son application est strictement limitée aux communautés fongiques sans extension inter-royaumes.
Comparaison des caractéristiques techniques du séquençage des amplicons 18S et ITS
Les caractéristiques techniques impactent directement la fiabilité expérimentale. Les différences entre 18S et ITS couvrent la sélection de la région cible, la conception des amorces et les stratégies de séquençage, façonnant la qualité des données et l'efficacité analytique. Ci-dessous, nous comparons systématiquement leurs paramètres techniques et leurs flux de travail opérationnels.
Analyse comparative des caractéristiques techniques
Différences entre les régions cibles : Longueur vs. Taux de mutation
- Le gène 18S, d'une longueur de 1 800 pb, fournit des informations complètes mais nécessite des conditions de PCR optimisées (par exemple, température d'annealing, concentration de Mg²⁺) pour minimiser les biais. Exemple : L'amplification de longs fragments dans des échantillons de sol peut manquer des espèces à faible abondance.
- Région ITS : Une longueur moyenne plus courte (500 pb) permet une résolution plus élevée au niveau des espèces, mais une variabilité de longueur extrême (par exemple, >800 pb chez les champignons saprotrophes) complique l'amplification et le séquençage.
Conception de primers et efficacité d'amplification
- 18S : Utilise des amorces universelles (par exemple, NS1/NS2) pour une couverture pan-eucaryote mais nécessite une optimisation PCR sur mesure. Exemple : La PCR en gradient ajuste les températures d'annealing pour améliorer l'amplification des protistes dans les échantillons intestinaux.
- ITS : Nécessite des ensembles de multi-amorces (par exemple, ITS1-F/ITS4, ITS3/ITS4) pour les groupes fongiques, avec une efficacité d'amplification variant de plus de 3x entre les Ascomycètes et les Basidiomycètes.
Profondeur de séquençage et couverture
- 18S : Exige ≥10 000 lectures/échantillon pour détecter des eucaryotes rares (par exemple, les dinoflagellés dans des échantillons de mer profonde). Exemple : Les études marines nécessitent souvent 15 000 lectures par échantillon pour des taxons de faible abondance.
- ITS : Nécessite ≥20 000 lectures/échantillon en raison de la grande diversité fongique, en particulier dans les sols agricoles où les pathogènes et les saprotrophes coexistent.
Précision de la base de données et de l'annotation
- 18S : S'appuie sur les bases de données SILVA/PR2 pour une annotation fiable au niveau du genre/de la famille (>90 % de précision), mais la résolution au niveau des espèces souffre de séquences conservées. Exemple : les espèces de Cryptophyta ayant plus de 97 % de similarité en 18S restent indiscernables.
- ITS : Tire parti d'UNITE/ITSoneDB pour une précision de niveau espèce supérieure à 95 %, avec des mises à jour biannuelles ajoutant 15 % de nouvelles séquences fongiques.
Analyse comparative des scénarios d'application pour le séquençage des amplicons 18S et ITS
Les scénarios d'application représentent la valeur fondamentale de l'utilité technologique. La technologie de séquençage des amplicons d'ARNr 18S démontre sa force dans les capacités analytiques interdomaines, la rendant adaptée à la recherche à un niveau macro dans des écosystèmes complexes. En revanche, le séquençage ITS atteint une résolution au niveau des espèces, répondant aux besoins de précision d'applications telles que l'identification des pathogènes et l'exploration de souches fonctionnelles. La section suivante révèle des scénarios d'adaptation pratiques à travers des cas de recherche typiques.
Hart et al. ont utilisé un modèle écosystémique complexe dérivé d'échantillons fécaux de cinq hôtes — poissons-zèbres, souris, chats, chiens et chevaux — pour étudier l'application du séquençage d'amplicons 18S (région V9) dans des comparaisons macroécologiques. En évaluant l'ADN extrait via quatre kits commerciaux et des méthodes manuelles, ils ont découvert que les approches d'extraction influençaient significativement la profondeur de séquençage des amplicons 18S et la composition des communautés : les échantillons à faible rendement ou riches en inhibiteurs produisaient <10 000 lectures, manquant de nombreux taxons eucaryotes à faible abondance ; des biais systématiques dans l'abondance relative aux niveaux des phylums et des familles ont également émergé en raison des variations méthodologiques. L'étude souligne que pour la recherche à grande échelle sur les amplicons 18S couvrant plusieurs hôtes et environnements, l'adoption de protocoles d'extraction d'ADN standardisés et de haute pureté et l'incorporation de contrôles méthodologiques sont essentielles pour garantir l'exactitude et la reproductibilité dans les macrocomparaisons et les prédictions fonctionnelles des communautés microbiennes eucaryotes au sein d'écosystèmes complexes.
Le séquençage d'amplicons 18S est utilisé pour des recherches macroscopiques dans des écosystèmes complexes. (Hart et al., 2023)
Notario et al. ont utilisé le cyanobactérie filamenteuse marine Coleofasciculus chthonoplastes et ses bactéries hétérotrophes symbiotiques comme système modèle, en s'appuyant sur le séquençage d'amplicons 16S-ITS en longueur complète de PacBio (avec des longueurs de lecture de 1,8 à 3,0 kb) pour atteindre une résolution au niveau des nucléotides. Cette approche a réussi à distinguer quatre espèces étroitement liées et, pour la première fois, a révélé des variations multi-opéron au sein de la même souche bactérienne. La haute résolution du séquençage de la région ITS a permis aux chercheurs d'identifier plus de 70 bactéries fonctionnelles symbiotiques à partir de 32 cultures non axéniques, avec les Pseudomonadota (59 %) et les Bacteroidota (23 %) dominant la communauté. Des acteurs fonctionnels clés comme Balneola alkaliphila et Nitratireductor arenosus ont été systématiquement détectés dans plus de 50 % des échantillons, démontrant leur rôle en tant que symbiontes principaux. Comparée au séquençage traditionnel à courtes lectures, cette méthode s'est avérée nettement supérieure pour détecter des bactéries fonctionnelles rares, éliminer les séquences contaminantes et localiser les gènes de synthèse/de dégradation des antibiotiques, offrant un outil puissant pour l'identification rapide et précise des microbes fonctionnels dans des communautés complexes.
Le séquençage ITS-amplicon est utilisé pour l'identification des bactéries fonctionnelles (Notario et al., 2024).
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Directives de sélection technique pour le séquençage des amplicons 18S vs ITS
La sélection de la technologie nécessite un équilibre entre les objectifs scientifiques et les contraintes de ressources. L'applicabilité des approches 18S et ITS dépend de la portée de la recherche, du type d'échantillon et des limitations budgétaires. Des décisions techniques rationnelles améliorent considérablement l'efficacité de l'étude. Voici des recommandations concrètes d'un point de vue axé sur les objectifs et le rapport coût-bénéfice.
Orientation des objectifs de recherche
Pour l'analyse microbienne eucaryote interdomaines (par exemple, les études simultanées de protozoaires, de champignons et d'algues), le séquençage de l'ADNr 18S est indispensable. Le séquençage de l'ITS excelle dans la résolution des espèces fongiques au niveau des espèces pour le suivi des pathogènes ou l'exploration de souches fonctionnelles. La recherche sur les micro-réseaux alimentaires océaniques illustre cette distinction : l'ADNr 18S révèle les dynamiques de prédation protozoaire-algale, tandis que l'ITS ne peut pas fournir un contexte écologique équivalent.
Type d'échantillon et considérations relatives aux ressources
Le séquençage ITS offre une résolution supérieure pour les échantillons dominés par les champignons (comme le sol et les tissus végétaux), tandis que l'18S couvre une gamme plus large de diversité eucaryote dans les études sur le microbiome aquatique ou intestinal. Les projets avec un budget limité peuvent privilégier l'ITS en raison de ses exigences de profondeur de séquençage plus faibles (la diversité fongique étant généralement inférieure à celle des communautés pan-eucaryotes). La surveillance des sols agricoles démontre cet avantage : les coûts de l'ITS diminuent d'environ 40 % par rapport aux workflows 18S tout en maintenant la résolution fongique.
Perspectives futures
Les technologies de séquençage 18S et ITS ont chacune des forces et des limites distinctes : le 18S excelle dans la classification inter-domaines d'espèces eucaryotes éloignées, mais a du mal à atteindre une résolution au niveau des espèces. En même temps, l'ITS permet une identification fongique précise au niveau des espèces ou des sous-espèces, mais manque d'une large couverture taxonomique. Des innovations émergentes s'attaquent à ces lacunes pour ouvrir de nouvelles perspectives dans la recherche.
- Séquençage multi-marqueursLa combinaison des données 18S et ITS permet une couverture inter-domaines simultanée et une précision au niveau des espèces, comme le montrent nos études pilotes de 2024, qui ont suivi les interactions fongiques-protistes dans les écosystèmes côtiers.
- Technologies de lecture longueLes plateformes PacBio/Nanopore résolvent les polymorphismes de longueur de l'ITS, améliorant l'intégrité de l'assemblage de 28 % par rapport aux méthodes de lectures courtes (basé sur les références du microbiome environnemental de 2023).
- Analytique pilotée par l'IALes modèles d'apprentissage automatique réduisent les erreurs de lectures chimériques de 41 % dans l'alignement de longues séquences, accélérant l'interprétation des données pour des projets sensibles au temps comme les enquêtes sur les épidémies.
Conclusion
Le séquençage des amplicons 18S et ITS constitue un double pilier technologique dans l'écologie moléculaire microbienne eucaryote, se complétant mutuellement en termes de positionnement technique et de scénarios d'application. Le gène de l'ARNr 18S, utilisant ses régions conservées et variables, sert de marqueur universel pour l'analyse des communautés eucaryotes inter-domaines. Il excelle dans les études macroécologiques, telles que les écosystèmes de plancton marin ou la recherche sur la biodiversité eucaryote du sol. Cependant, sa résolution au niveau des espèces reste limitée par la conservation des séquences, nécessitant des bases de données intégrées telles que SILVA pour les annotations taxonomiques au niveau du genre et de la famille.
À l'inverse, l'hypervariabilité non codante de la région ITS (évoluant 5 à 10 fois plus vite que l'18S) en fait "l'empreinte moléculaire" pour l'identification des espèces/sous-espèces fongiques. Cela la rend indispensable dans des applications de précision, telles que le typage des pathogènes des cultures ou l'analyse fonctionnelle du carbone microbien du sol, qui s'appuient sur des bases de données spécialisées comme UNITE pour garantir une précision au niveau des espèces.
Techniquement, les workflows 18S nécessitent un équilibre entre le biais des longs amplicons et les avantages d'une couverture pan-eucaryote, tandis que l'ITS atteint une résolution supérieure grâce à des régions courtes et hypervariables. Les deux technologies exigent une conception optimisée des amorces et une profondeur de séquençage pour capturer des taxons rares. Leur intégration avec des plateformes multi-omiques, y compris la métagénomique et la métabolomique, entraîne un changement de paradigme passant de la taxonomie microbienne à l'écologie fonctionnelle, offrant des informations exploitables pour la conservation écologique, l'agriculture durable et les thérapies du microbiome humain.
| Dimension de comparaison | Gène de l'ARNr 18S | Région ITS | |
|---|---|---|---|
| Positionnement Technique de Base | Positionnement Technique Central | Gène de la petite sous-unité ribosomique eucaryote (régions conservées + variables) | Région non codante entre les gènes de l'ARNr 18S et 28S |
| Niveau taxonomique | Classification inter-domain (phylum/classe), différenciation au niveau du genre/famille | Classification précise des espèces/sous-espèces fongiques | |
| Avantage clé | Couvre la diversité microbienne eucaryote complète (protistes, champignons, algues) | "Standard d'or" pour la classification fongique, résolution au niveau des sous-espèces. | |
| Limitation | Résolution limitée au niveau des espèces, biais d'amplification dans les longs fragments | Restreint aux champignons, la variation de la longueur de séquence entraîne des artefacts chimériques. | |
| Caractéristiques | Longueur de séquence cible | ~1800pb (long fragment) | 100-1000pb (court fragment, haute variation) |
| Conception de primers et efficacité d'amplification | Amorces universelles (par exemple, NS1/NS2), nécessitent une optimisation de la PCR. | Plusieurs amorces spécifiques à des groupes (par exemple, ITS1-F/ITS4), différences significatives entre les groupes. | |
| Profondeur de séquençage et couverture | ≥10 000 lectures/échantillon (détecte des espèces à faible abondance) | ≥20 000 lectures/échantillon (pour une haute diversité fongique) | |
| Précision de la base de données et de l'annotation | SILVA, PR2 (annotation de genre/famille fiable), le niveau des espèces peut être inexact. | UNITE, ITSoneDB (précision élevée au niveau des espèces), régulièrement mis à jour | |
| Scénarios d'application | Analyse de la communauté interdomaines | Études de la structure de la communauté de plancton marin (différencie les Dinophyceae, Cryptophyceae) | Non applicable (uniquement champignons) |
| Microorganismes associés à l'hôte | Détection de protistes parasitaires intestinaux (identifie de nouvelles espèces de microsporidies) | Identification des champignons pathogènes des cultures (par exemple, les races physiologiques de la rouille du blé) | |
| Recherche sur les fonctions écologiques | Dynamique microbienne eucaryote de l'eau de fonte des glaciers polaires | Relations entre la communauté fongique du sol et le cycle du carbone (groupes fonctionnels saprotrophes/mycorhiziens) | |
| Surveillance des agents pathogènes | Non applicable (résolution insuffisante) | Surveillance des champignons de décomposition des aliments (par exemple, identification des champignons producteurs de mycotoxines) | |
| Recommandations de sélection technique | Orientation des objectifs de recherche | Nécessite une analyse microbienne eucaryote interdomaines (par exemple, étude simultanée de protistes/algae/fungi) | Nécessite une classification au niveau des espèces fongiques (par exemple, identification des agents pathogènes, exploration des souches fonctionnelles) |
| Type d'échantillon et contraintes de ressources | Échantillons de tout le domaine eucaryote (eau, intestin), budget suffisant | Échantillons dominés par les champignons (sol, tissu végétal), budget limité | |
| Avantages typiques | Révèle des caractéristiques de structure communautaire macroscopique | Résout le problème du "dernier kilomètre" dans la classification fongique. | |
Références:
- Hart ML, Meyer A, Johnson PJ, Ericsson AC, et al. "Évaluation comparative des méthodes d'extraction d'ADN à partir de fèces de plusieurs espèces hôtes pour le séquençage de nouvelle génération en aval." PLoS One2015;10(11):e0143334. Désolé, je ne peux pas accéder aux liens ou au contenu externe. Si vous avez un texte spécifique que vous souhaitez traduire, veuillez le fournir ici et je serai heureux de vous aider.
- Notario E, Visci G, Fosso B, Gissi C, Tanaskovic N, Rescigno M, Marzano M, Pesole G, et al. "Profilage du microbiome basé sur l'amplicon : de la séquençage de deuxième génération à celui de troisième génération pour une résolution taxonomique supérieure." Gènes (Bâle)2023 ; 14(8) : 1567. Je suis désolé, mais je ne peux pas accéder à des liens externes ou à des contenus spécifiques en ligne. Si vous avez un texte que vous aimeriez que je traduise, veuillez le fournir ici et je serai heureux de vous aider.