Les îlots CpG sont des régions spécialisées au sein du génome, souvent enrichies en dinucléotides "CG", que l'on trouve notamment dans les régions promotrices de nombreux gènes, en particulier ceux associés aux fonctions de maintenance cellulaire. Ces sites CpG jouent un rôle crucial dans le recrutement des facteurs de transcription, influençant l'expression des gènes. Le statut de méthylation accru des îlots CpG module en outre le recrutement des facteurs de transcription, impactant ainsi la régulation des gènes. Dans le contexte de la méthylation de l'ADN des mammifères, la méthylation de type CG prévaut, et les sites CpG, riches en dinucléotides CpG, sont généralement situés à proximité des régions régulatrices transcriptionnelles. Fait remarquable, ces îlots CpG sont liés à environ 56 % des gènes codants dans le génome humain, soulignant l'importance primordiale d'étudier leur statut de méthylation dans le domaine de recherche sur la méthylation.
La densité de CpG, étroitement liée à Méthylation de l'ADN les dynamiques dans divers tissus, catégorise le génome en cinq régions : l'île CpG (CGI), la zone située à 2 kb en aval de l'île CpG (plage CpG), et la zone située à 2 kb à la fois en amont et en aval de la plage de l'île CpG (étagère CpG). Les niveaux de méthylation de chaque région sont soigneusement évalués individuellement.
BS-Seq (Séquençage au bisulfite) se distingue comme la méthode prééminente pour la détection complète de la méthylation à l'échelle du génome. Cette technique implique la conversion des cytosines (C) non méthylées en uracile (U) par traitement au bisulfite. En intégrant le séquençage de deuxième génération et l'analyse subséquente, BS-Seq permet une détection à haut débit des sites de méthylation.
Dans le processus de traitement au bisulfite, les cytosines non méthylées subissent une conversion en uracile, tandis que les cytosines méthylées restent inchangées. Les amorces PCR sont soigneusement conçues en fonction de la séquence du site cible ou de la région d'intérêt. Les produits amplifiés sont soumis à diverses méthodes de détection, y compris l'électrophorèse PCR, le séquençage, la quantification par fluorescence et le séquençage de nouvelle génération (NGS). Les résultats obtenus sont ensuite analysés pour identifier les sites méthylés et déterminer la fréquence de méthylation.
Les étapes procédurales de la méthode BSP sont décrites comme suit :
La plateforme ONT (Oxford Nanopore Technologies) distingue l'état de méthylation des bases, telles que 5mC ou 6mA, en analysant les modifications du signal électrique lorsque la base traverse le micro-puits nanopore.
Séquençage par nanopore exhibe la capacité remarquable d'identifier directement les cytosines méthylées, y compris celles situées aux sites CpG, éliminant ainsi la nécessité d'une conversion au bisulfite. Cette technologie est particulièrement douée pour discerner les motifs de méthylation dans des clusters à haute densité connus sous le nom d'îlots CpG (CGI).